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鼠疫桿菌(YP)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光-PCR 法)

產(chǎn)品簡(jiǎn)介

鼠疫桿菌(YP)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光-PCR 法)鼠疫是由鼠疫耶爾森氏菌(Yersinia Pestis, YP),簡(jiǎn)稱鼠疫桿菌,引起危害人類健康的烈性傳染病之一,具有傳染性強(qiáng)、傳播迅速、疫情嚴(yán)重、死亡率高等特點(diǎn), 為國(guó)際檢疫傳染病。

產(chǎn)品型號(hào):
更新時(shí)間:2025-07-09
廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家
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鼠疫桿菌(YP)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光-PCR 法)


產(chǎn)品名稱:鼠疫桿菌(YP)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光-PCR 法)

英文名稱:Yersinia Pestis Detection Kit (Real-Time PCR Method)

鼠疫是由鼠疫耶爾森氏菌(Yersinia Pestis, YP),簡(jiǎn)稱鼠疫桿菌,引起危害人類健康的烈性傳染病之一,具有傳染性強(qiáng)、傳播迅速、疫情嚴(yán)重、死亡率高等特點(diǎn), 為國(guó)際檢疫傳染病。

本試劑盒適用于檢測(cè)動(dòng)物腺、肝、脾、肺組織及人痰、血液等標(biāo)本中分離出的鼠疫桿菌,用于鼠疫桿菌的輔助診斷。

本試劑盒采對(duì)鼠疫桿菌基因設(shè)計(jì)特異性的引物和探針,用熒光 PCR 技術(shù)對(duì)鼠疫桿菌的核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè),用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。

【試劑組成】

         

規(guī)        

酶液

50μL×1   管

YP 反應(yīng)液

1.0mL×1 管

YP 陽(yáng)性質(zhì)控品

50μL×1 管

陰性質(zhì)控品

250μL×1   管

說(shuō)明:不同批號(hào)的試劑盒組分不可交互使用。

【運(yùn)輸及保存】

-20℃±5℃,避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融次數(shù)不超過(guò) 5 次,有效期 12 個(gè)月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測(cè)儀。


【注意事項(xiàng)】

1.  樣品處理(樣本處理區(qū))

1.1  樣本前處理

組織樣品:稱取組織樣品約 0.5g,置于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,勻漿后取 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;

痰、尿液等液體樣品:取 100μL 于滅菌離心管中;

血液樣品:取抗凝血下層血細(xì)胞 50μL,加入 100μL 雙蒸水吹勻。

1.2  DNA 提取

1)  對(duì)上述處理好的標(biāo)本加入 50μL 核酸提取液,100℃恒溫處理 10min,13,000

rpm 離心 5min,取上清液轉(zhuǎn)移至新的 1.5mL EP 管,-20℃保存;

2)  DNA 的提取也可以采用我公司生產(chǎn)的 DNA/提取試劑盒

(離心柱提取法),請(qǐng)嚴(yán)格按照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。

2.  試劑配制(試劑準(zhǔn)備區(qū))

根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù),設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對(duì)照+1 管陽(yáng)性對(duì)照;樣品每滿 7 份,多配制 1 份),每測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表:

試劑

YP 反應(yīng)液

酶液

用量(樣本數(shù)為   N)

20μL

1μL

將混合好的測(cè)試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中,21uL/管。

3.  加樣(樣本處理區(qū))

將步驟 1 提取的 DNA、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

4.  PCR 擴(kuò)增(核酸擴(kuò)增區(qū))

4.1 將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi);

4.2 設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL;


熒光通道選擇: 檢測(cè)通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)

NONE,請(qǐng)勿選擇 ROX 參比熒光。

1.1 推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:

步驟

循環(huán)數(shù)

溫度

時(shí)間

收集熒光信號(hào)

1

1 cycle

95℃

10min

2

40 cycles

94℃

15sec

55℃

30sec




2.  結(jié)果分析判定

2.1  結(jié)果分析條件設(shè)定

設(shè)置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機(jī)器自動(dòng)分析的結(jié)果分析,當(dāng)曲線出現(xiàn)整體傾斜時(shí),根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動(dòng)閾值線至高于陰性對(duì)照),重新分析結(jié)果。

2.2  結(jié)果判斷

陽(yáng)性:檢測(cè)通道 Ct 值≤35.0,且曲線有明顯的指數(shù)增長(zhǎng)曲線。

可疑:檢測(cè)通道 Ct 值>35.0,且出現(xiàn)明顯擴(kuò)增曲線的樣本建議重復(fù)試驗(yàn),重復(fù)試驗(yàn)結(jié)果出現(xiàn) Ct 值≤35.0 和明顯擴(kuò)增曲線者為陽(yáng)性,否則為陰性。

陰性:樣本檢測(cè)結(jié)果無(wú) Ct 值且無(wú)明顯的擴(kuò)增曲線。

3.  檢測(cè)方法的局限性

? 樣本檢測(cè)結(jié)果不樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān);

? 樣本提取過(guò)程中沒(méi)有控制好交叉污染,會(huì)出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果;

? 陽(yáng)性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏,會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果;

? 病原體在流行過(guò)程中基因突變、重組,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

? 不同的提取方法存在提取效率差異,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

? 試劑運(yùn)輸,保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測(cè)效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測(cè)不準(zhǔn)確的結(jié)果。

4.  質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)

陰性質(zhì)控品:無(wú)明顯擴(kuò)增曲線或無(wú) Ct 值顯示;

陽(yáng)性質(zhì)控品:擴(kuò)增曲線有明顯指數(shù)生長(zhǎng)期,且 Ct 值≤32; 以上條件應(yīng)同時(shí)滿足,否則實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效。

【注意事項(xiàng)】

? 所有操作嚴(yán)格按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行;

? 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化,wan全混勻并短暫離心;

? 反應(yīng)液應(yīng)避光保存;

? 反應(yīng)中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

? 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)與用工作服;

? 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行,以免交叉污染;

? 實(shí)驗(yàn)完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺(tái)和移液器;

? 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對(duì)待,并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。

【參考文獻(xiàn)】

[1]   國(guó)家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局.SN/T 1280-2003 國(guó)境口岸鼠疫檢驗(yàn)規(guī)程[S].北京:科學(xué)出版社, 2003.

[2]   張志凱, 海榮, 蔡虹, 等. 鼠疫耶爾森菌的多重 PCR 檢測(cè)方法[J]. 中國(guó)媒介生物學(xué)及控制雜志, 2007.

[3]   吉林省質(zhì)量技術(shù)監(jiān)督局. DB22/T 2081-2014 鼠疫耶爾森菌核酸的測(cè)定-熒光PCR 方法[S].

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